현대 교육학 연구의 실제 문제. 교육학 연구의 실제 문제
촉매 반응의 유형에 따라 알려진 모든 효소는 6가지 부류로 나뉩니다.
1. 산화환원 반응을 촉매하는 산화환원효소.
2. 다양한 화합물에서 분자내 결합의 가수분해 절단 반응을 촉매하는 가수분해효소.
3. 화학 결합에 포함된 에너지의 동시 전달과 함께 화학 그룹 및 잔기의 분자간 또는 분자 내 이동의 반응을 촉매하는 전이효소.
4. ATP 또는 기타 유사한 삼인산의 피로인산 결합의 절단과 함께 두 분자의 반응을 촉매하는 리가제(합성효소).
5. 이중 결합에서 유기 화합물의 다양한 화학 그룹의 비가수분해 제거 또는 추가 반응을 촉매하는 리아제.
6, 유기 화합물의 이성질체로의 전환을 촉매하는 이성질체.
토양에서는 토양의 생물역학에 매우 중요한 산화환원효소와 가수분해효소가 널리 퍼져 있으며 충분히 자세히 연구되어 왔다.
카탈라아제
(H 2 O 2: H 2 O 2 -산화환원효소)
카탈라아제는 물과 분자 산소의 형성과 함께 과산화수소의 분해 반응을 촉매합니다.
H 2 O 2 + H 2 O 2 O 2 + H 2 O.
과산화수소는 살아있는 유기체의 호흡 중에 그리고 유기 물질의 산화의 다양한 생화학 반응의 결과로 형성됩니다. 과산화수소의 독성은 일중항 산소인 *O 2 에 의해 나타나는 높은 반응성에 의해 결정됩니다. 그것의 높은 반응성은 통제되지 않은 산화 반응으로 이어집니다. 카탈라아제의 역할은 유기체에 유독한 과산화수소를 파괴하는 것입니다.
카탈라아제는 미생물과 식물을 포함한 살아있는 유기체의 세포에 널리 분포되어 있습니다. 토양은 또한 높은 카탈라아제 활성을 나타냅니다.
토양의 카탈라제 활성을 측정하는 방법은 방출된 산소의 양(가스 측정법) 또는 과망간계 적정에 의해 결정되는 분해되지 않은 과산화물의 양에 의해 토양과 상호작용할 때 과산화수소의 분해 속도를 측정하는 것을 기반으로 합니다. 착색된 복합체의 형성과 함께 비색법에 의해.
E.V.의 연구 다덴코와 K.Sh. Kazeev는 샘플을 보관하는 동안 모든 효소의 카탈라아제 활성이 가장 크게 감소한다는 것을 발견했습니다. 따라서 샘플링 후 첫 주에 측정을 수행해야 합니다.
금연 건강 증진 협회. 갈스티안
분석 진행. 카탈라아제의 활성을 결정하기 위해 고무 호스로 연결된 2개의 뷰렛 장치가 사용되며, 이 장치는 물로 채워져 균형을 이룹니다. 뷰렛에서 특정 수위를 유지하면 장치에서 온도 평형이 달성되었음을 나타냅니다. 무게를 잰 부분(1g)의 흙을 이중 플라스크의 구획 중 하나에 넣습니다. 플라스크의 다른 구획에 3% 과산화수소 용액 5ml를 붓습니다. 플라스크는 고무 호스로 측정 뷰렛에 연결된 유리 튜브가 있는 고무 마개로 단단히 닫힙니다.
실험은 20 ° C의 온도에서 수행됩니다. 다른 온도에서는 반응 속도가 달라 결과가 왜곡되기 때문입니다. 원칙적으로 중요한 것은 공기의 온도가 아니라 과산화물의 경우 20℃가 되어야 합니다. 기온이 20℃보다 현저히 높을 경우(여름철) 지하실이나 다른 시원한 방에서 분석. 이러한 경우 권장되는 20 ° C의 수조 사용은 거의 효과적이지 않습니다.
실험의 시작은 과산화물이 토양과 혼합되고 용기의 내용물이 흔들리는 순간 스톱워치 또는 모래 시계로 표시됩니다. 혼합물을 흔드는 것은 플라스크를 손으로 만지지 않고 코르크를 잡고 실험 내내 수행됩니다. 방출된 산소는 뷰렛에서 물을 밀어내고 1분과 2분 후에 그 수위가 기록됩니다. 과산화물 분해 반응의 단순성으로 인해 3분 동안 1분마다 산소량을 측정하도록 권장하는 것은 분석에 소요되는 시간을 증가시킬 뿐입니다.
이 기술을 통해 한 연구원은 하루에 100개 이상의 샘플에서 카탈라아제 활성을 분석할 수 있습니다. 5~6개의 Vessel을 사용하여 함께 분석을 수행하는 것이 편리합니다. 이 경우 한 사람이 직접 분석에 참여하여 뷰렛의 높이를 모니터링하고 두 번째 사람이 시간을 모니터링하고 데이터를 기록하고 용기를 세척합니다.
토양은 대조군으로 건열(180°C)로 살균됩니다. 일부 토양, 화합물 및 미네랄은 살균 후에도 과산화물의 무기 촉매 분해 활성이 전체 활성의 최대 30-50%입니다.
카탈라아제 활성은 1g의 토양에서 1분 동안 방출되는 O 2 밀리리터로 표시됩니다.
시약: H 2 O 2 3% 용액. Perhydrol 농도는 주기적으로 확인해야 하며 분석 직전에 작업 용액을 준비해야 합니다. 분석 저울에서 퍼히드롤 농도를 설정하기 위해 H 2 O 2 1g을 100ml 메스플라스크에 달아 부피를 표시선까지 맞추고 흔든다. 생성된 용액 20ml를 250ml 원뿔형 플라스크(3회 반복)에 넣고 증류수 50ml와 20% H 2 SO 4 2ml를 추가합니다. 그런 다음 0.1 N으로 적정합니다. KMnO 4의 용액. KMnO 4 용액 1ml는 H 2 O 2 0.0017008g에 해당합니다. 퍼하이드롤의 농도가 설정된 후 증류수로 희석하여 3% 용액을 준비합니다. KMnO 4 적정 용액은 고정된 채널에서 준비되고 역가를 설정하기 위해 며칠 동안 배양됩니다.
탈수소효소
(기질: NAD(P)-산화환원효소).
탈수소효소는 유기 물질의 탈수소화에 의해 산화환원 반응을 촉매합니다. 다음과 같이 실행됩니다.
AH 2 + B A + BH 2
토양에서 탈수소화의 기질은 비특이적 유기 화합물(탄수화물, 아미노산, 알코올, 지방, 페놀 등) 및 특정(휴믹 물질)일 수 있습니다. 산화환원 반응에서 탈수소효소는 수소 운반체 역할을 하며 두 그룹으로 나뉩니다. 1) 호기성, 이동된 수소를 공기 중의 산소로 이동 2) 혐기성, 수소를 다른 수용체인 효소로 전달합니다.
탈수소 효소의 작용을 감지하는 주요 방법은 메틸렌 블루와 같이 산화 환원 전위가 낮은 지표를 줄이는 것입니다.
토양 탈수소효소의 활성을 결정하기 위해 무색의 테트라졸륨 염(2,3,5-triphenyltetrazolium chloride - TTX)이 수소로 사용되며, 이는 적색 포르마잔 화합물(triphenylformazan - TPP)로 환원됩니다.
분석 진행. 준비된 토양의 무게를 잰 부분(1g)을 12-20ml 튜브 바닥의 깔때기를 통해 조심스럽게 놓고 완전히 혼합합니다. 탈수소 기질(포도당)의 0.1M 용액 1ml와 새로 준비된 1% TTX 용액 1ml를 추가합니다. 튜브는 에어로스타트 또는 진공 데시케이터에 배치됩니다. 측정은 10-12mmHg의 진공에서 공기가 배출되는 혐기성 조건에서 수행됩니다. 미술. 2-3분 이내에 30 ° C에서 24 시간 동안 자동 온도 조절 장치에 두십시오. 토양을 기질과 함께 배양할 때 톨루엔은 방부제로 첨가되지 않습니다. 그것은 탈수소 효소의 작용을 강력하게 억제합니다. 대조군은 멸균된 토양(180°C에서 3시간)과 토양이 없는 기질입니다. 배양 후 에틸알코올 또는 아세톤 10ml를 플라스크에 넣고 5분간 흔든다. 생성된 유색 TPP 용액을 여과하고 비색합니다. 매우 강렬한 색상으로 용액을 알코올 (아세톤)으로 2-3 번 희석합니다. 10mm 큐벳과 500-600 파장의 광 필터를 사용하십시오. mg 단위의 포르마잔의 양은 표준 곡선에서 계산됩니다(1 ml에 0.1 mg). 탈수소효소의 활성은 24시간 동안 토양 10g당 mg TTF로 표시되며 결정 오류는 최대 8%입니다.
시약:
1) 2,3,5-트리페닐테트라졸륨 클로라이드의 1% 용액;
2) 0.1M 포도당 용액(18g의 포도당을 1000ml의 증류수에 용해);
3) 에틸 알코올 또는 아세톤;
4) 표준 스케일에 대한 트리페닐포르마잔. 검량선을 작성하려면 위에서 설명한 대로 포르마잔 농도(1ml에 0.01~0.1mg 포르마잔)와 광색계를 포함하는 에틸 알코올, 아세톤 또는 톨루엔에 일련의 용액을 준비합니다.
포르마잔이 없는 경우 아황산수소나트륨(아황산암모늄, 포도당이 있는 상태에서 아연 분말)으로 TTX를 환원시켜 얻습니다. TTX 용액의 초기 농도는 1 mg/ml입니다. 란셋 끝에 있는 TTX 원액 2ml에 결정질 나트륨 하이드로설파이트를 가합니다. 형성된 포르마잔 침전물을 톨루엔 10ml에 녹인다. 이 부피의 톨루엔에는 2mg의 포르마잔(0.2mg/ml)이 포함되어 있습니다. 스케일에 대한 작업 솔루션은 추가 희석에 의해 준비됩니다.
인버타제
(β-프룩토푸라노시다제, 수크라제)
Invertase는 탄수화물 분해 효소로, 자당, 라피노오스, 젠티아노오스 등의 β-프룩토푸라노시다아제 결합에 작용합니다. 이 효소는 자당을 가장 활발하게 가수분해하여 환원당인 포도당과 과당을 형성합니다.
인버타제
С 12 Н 22 О 11 + Н 2 О С 6 Н 12 О 6 + С 6 Н 12 О 6
자당 포도당 과당
Invertase는 자연계에 널리 퍼져 있으며 거의 모든 유형의 토양에서 발생합니다. 인버타제의 매우 높은 활성이 산악 초원 토양에서 발견되었습니다. 인버타제 활성은 부식질 함량 및 토양 비옥도와 분명히 상관관계가 있습니다. 비료의 효과를 평가하기 위해 비료의 효과를 연구할 때 권장됩니다. 토양 인버타제의 활성을 측정하는 방법은 Bertrand에 따른 환원당의 정량적 설명과 효소 작용 전후의 자당 용액의 광학 특성 변화에 기초합니다. 첫 번째 방법은 매우 넓은 진폭의 활성과 기질 농도를 가진 효소를 연구할 때 적용할 수 있습니다. Polarimetric 및 photocolorimetric 방법은 당 농도가 더 까다로우며 높은 농도의 토양에서는 허용되지 않습니다. 유기물유색 용액이 얻어지는 곳; 따라서 이러한 방법은 토양 연구에서 제한적으로 사용됩니다.
이 연구의 목적은 4가지 효소 시스템인 탈수소효소, 카탈라아제, 인버타아제 및 요소분해효소를 사용하여 도로에서 서로 다른 거리에 있는 토양의 생물학적 활성을 결정하는 것입니다.
기본 컨셉
토양 효소 학적 방법을 사용하면 토양에서 효소의 양적 함량이 아니라 토양 콜로이드 표면과 부분적으로 토양 용액에서 주로 흡착 (고정) 상태에 있는 효소의 활성을 결정할 수 있습니다.
토양 효소의 활성을 결정하는 방법의 원리는 최적의 온도, 배지의 pH 및 기질 농도 조건에서 반응 동안 처리되는 기질의 양 또는 생성된 반응 생성물의 양을 고려하는 것입니다.
산화환원효소 부류에 속하는 효소는 토양뿐만 아니라 살아있는 유기체의 세포에서 생화학적 과정에서 주도적인 역할을 하는 산화환원 반응을 촉매합니다. 토양에서 가장 널리 퍼져 있는 것은 카탈라아제 및 탈수소효소와 같은 산화환원효소이며, 이들의 활성은 토양 생성의 중요한 지표입니다.
카탈라아제는 세포에 유독한 과산화수소를 물과 분자 산소로 분해하며, 이는 유기물 산화의 다양한 생화학적 반응의 결과로 생명체가 호흡할 때 형성됩니다.
카탈라아제 활성은 토양과 상호 작용하는 동안 과산화수소의 분해 속도 측정을 기반으로 방출된 산소의 부피를 기반으로 하는 가스 측정법에 의해 결정됩니다.
탈수소효소는 호흡 과정에 관여하는 효소로 산화 가능한 기질에서 수소를 분리합니다. 일부 탈수소효소는 수소를 분자 산소로 직접 전달하고 다른 탈수소효소는 일부 수용체(예: 퀴논, 메틸렌 블루)로 전달합니다.
탈수소효소 활성을 측정하기 위해 무색의 테트라졸륨염(2,3,5-triphenyltetrazolium chloride(TTX))이 수소 수용체로 사용되며, 이는 적색 포르마잔 화합물(트리페닐포르마잔(TPP))로 환원됩니다.
가수분해효소는 다양한 결합에 작용하는 다양한 복합 유기 화합물의 가수분해 반응을 수행합니다: 에스테르, 글루코사이드 아미드, 펩타이드 등. 이 부류에는 효소 인버타제, 우레아제 등이 포함되며, 그 활성은 토양의 생물학적 활성의 중요한 지표이며 인위적 영향을 평가하는 데 널리 사용되는 ...
Invertase는 sucrose, raffinose, stachioea의 p-fructofuranoside 결합에 작용하여 sucrose를 같은 몰량의 포도당과 fructose로 나눕니다.
인버타제 활성의 광비색 측정은 자당이 분해되는 동안 형성되는 환원당을 고려하는 것을 기반으로 합니다.
유기 질소 화합물의 분해는 세포 외 효소의 직접적인 참여로 수행됩니다. 요소 분해 효소 활동 중에 형성된 암모니아는 식물 영양의 공급원으로 작용합니다.
요소분해효소는 요소의 가수분해를 촉매합니다. 가수분해의 최종 생성물은 암모니아와 이산화탄소입니다. 요소는 식물 잔류 물, 분뇨 및 질소 비료의 구성으로 토양에 들어갑니다. 그것은 또한 단백질과 핵산과 같은 질소 유기 화합물의 전환 과정에서 중간 생성물로 토양 자체에서 형성됩니다.
카탈라아제 활성 측정
장비 및 시약:
가스 계량 시스템(그림 8); H 2 O 2 10% 용액; CaCO 마.
쌀. 8 - 토양 샘플에서 카탈라아제 활성의 가스 측정 측정을 위한 설치:
1 - 플라스크, 2 - 뷰렛, 3 - 어댑터, 4 - 물이 든 배
작업 순서
1. 체로 쳐진 흙 1g을 100cm 3 플라스크에 넣고 CaCO 3 0.5g을 추가합니다.
2. 10% 과산화수소수 1.7 cm 3 가 담긴 작은 유리잔을 핀셋을 사용하여 바닥에 조심스럽게 놓습니다.
3. 4cm 3 의 증류수로 토양 샘플을 적십니다.
4. 클램프가 장착된 티를 통해 두꺼운 벽 고무가 있는 뷰렛에 연결된 튜브가 있는 고무 마개로 플라스크를 단단히 닫습니다. 뷰렛은 배와 통신합니다. 뷰렛과 배는 물로 채워져 있습니다. 그것들의 수위는 균형을 이루고 배는 특정 높이에 고정됩니다.
5. 과산화수소가 담긴 용기가 뒤집히는 순간 스톱워치로 실험의 시작을 표시하고 플라스크의 내용물을 흔든다. 손으로 플라스크 바닥을 직접 만지지 않고 실험 내내 혼합물을 계속 흔들어야 합니다. 방출된 산소는 레벨이 표시된 뷰렛에서 물을 대체합니다.
6. 방출된 분자 산소의 양은 18-20 0 С의 온도에서 1분 이내에 고려됩니다.
7. 카탈라아제의 활성은 분당 토양 1g당 방출되는 산소의 부피(cm 3 )로 표시됩니다. 결정 오류는 최대 5%입니다.
8. 모든 토양 샘플에 대해 동일한 절차를 반복합니다.
9. 표에 따르면 15 카탈라아제로 연구된 토양의 포화 정도를 평가하기 위해 .
테이블 15 ‑ 효소로 토양 비화 정도를 평가하기 위한 척도
| 토양의 농축 정도 | 카탈라아제, О 2 cm 3 / g 1분 | 탈수소효소, 24시간당 10g당 TFP mg | 인버타제, 24시간 동안 1g당 포도당 mg | 요소분해효소, mg NH 4, 10g당 24시간 | 포스파타제, 1시간 동안 10g당 mg P 2 O 3 |
| 매우 가난한 | < 1 | <1 | <5 | <3 | <0,5 |
| 가난한 | 1-3 | 1-3 | 5-15 | 3-10 | 0,5-1,5 |
| 평균 | 3-10 | 3-10 | 15-50 | 10-30 | 1,5-5,0 |
| 부자 | 10-30 | 10-30 | 50-150 | 30-100 | 5-15 |
| 매우 부자 | >30 | >30 | > 150 | > 100 | > 15 |
탈수소효소 활성 측정
기기, 접시, 시약:
광색계; 모눈 종이; 0.1M 포도당 용액; 2,3,5-트리페닐테트라졸륨 클로라이드(TTX)의 1% 용액; CaCO3; 에탄올; 트리페닐포르마잔(TPP).
작업 순서
1. 각 샘플에서 1g의 공기 건조 토양 무게를 시험관에 넣고 10mg(주걱 끝에) CaCO 3, 0.1M 포도당 용액 1cm 3 및 1% TTX 1cm 3을 추가합니다. 솔루션 ; 각 튜브의 내용물을 잘 섞는다.
2. 시험관을 무산소 장치에 놓고 10-12mmHg의 진공 상태에서 펌프로 공기를 배출합니다. 미술. 2-3분 이내. 그런 다음 30°C에서 24시간 동안 배양합니다.
3. 배양 시간이 경과한 후, 에틸 알코올 25 cm 3 의 3-4회 분량으로 튜브의 내용물을 추출합니다. 이렇게 하려면 시험관에 소량의 알코올을 넣고 빨간색이 나타날 때까지 5분 동안 흔듭니다. 종이 필터를 통해 표면 액체를 침전시키고 여과하십시오. 시험관에 알코올의 다음 부분을 추가합니다.
4. 얻어진 유색 포르마잔 용액은 청색광 필터(500-600 nm)를 사용하여 FEC에서 비색입니다.
5. 표준 곡선을 사용하여 포르마잔의 양을 밀리그램 단위로 계산합니다. 이를 위해 1cm 3에 0.1mg 농도의 에틸 알코올에 포르마잔 표준 용액을 준비합니다. 표준용액(약 5점)을 희석하여 곡선을 그리는 작업용액을 준비한다. 시스템의 그래프 용지에 표준 곡선을 작성하십시오. 파장 500-600 nm에서의 광학 밀도 - 알코올의 포르마잔 농도.
6. 탈수소효소 활성을 계산합니다. 표에 따르면. 15 탈수소효소로 연구된 토양의 포화 정도를 추정합니다.
데이터 처리
탈수소효소 활성(X)은 다음 공식에 따라 하루에 토양 10g당 TFP 밀리그램으로 표시됩니다.
여기서 V는 여액의 총 부피, 25cm 3입니다.
10 - 토양 무게의 변환 계수, g;
v는 기질과 시약의 부피의 곱, 1cm 3입니다.
A - 검량선에서 얻은 TFP의 양, mg / cm 3. 정의 오차는 최대 8%입니다.
인버타제 활성의 측정
기기, 접시, 시약:
광색계; 5% 자당 용액; 아세테이트 완충액(pH 4.7); 톨루엔; 펠링 용액: a - CuSO 4 × 5H 2 O 40g을 물에 녹이고 1dm 3이 되게 하고 종이 필터로 여과하고 b - Rochelle 염(C 4 H 4 O 6 KNa × 4H 2 O )를 증류수에 녹이고 KOH 150g을 넣어 1dm3로 한다.
작업 순서
1. 각 토양 샘플 5g을 50cm 3 용량의 플라스크에 넣고 10cm 3 의 5% 자당 용액, 10ml의 아세테이트 완충액(pH 4.7) 및 톨루엔 5-6방울을 추가합니다.
2. 플라스크를 마개로 닫고 흔들어서 30 0 ℃의 온도 조절 장치에 24 시간 동안 놓고 주기적으로 흔든다.
3. 배양 후 플라스크의 내용물을 25 cm 3 부피 플라스크로 여과합니다. 표시에 가져옵니다.
4. 여액 6cm 3 을 큰 시험관에 취하여 로셸염용액 3cm 3 과 황산구리용액 3cm 3 를 넣어 잘 섞어 수욕에서 10분간 끓인다. 적색 침전물이 얻어진다.
5. 물에 녹인 용액으로 시험관을 식히고 내용물을 큰 시험관에 걸러냅니다. 파장 630nm, 큐벳 너비 1cm의 광 필터를 사용하여 FEC의 투명 여액을 측색합니다.
6. 검량선을 얻기 위해 표준 용액을 준비합니다: 1cm 3에 6mg 포도당. 희석하여 일련의 용액을 준비합니다. 광색 측정 및 곡선 작성: 광학 밀도 - 1cm 3의 포도당 농도.
7. 활동과 표를 계산합니다. 15 인버타제로 연구된 토양의 포화 정도를 추정합니다.
데이터 처리
인버타제(X)의 활성은 다음 공식에 따라 24시간 동안 토양 1g당 포도당 밀리그램으로 표시됩니다.
여기서 A는 광학 밀도의 보정 곡선에서 얻은 포도당의 양, mg / cm 3입니다.
m - 토양 샘플, 5g;
V는 여액의 총 부피, 25cm 3,
v는 분석을 위해 취한 여과액의 부피, 6cm 3입니다.
결정 오류는 최대 5%입니다.
토양의 요소분해효소 활성 측정
기기, 접시, 시약:
광색계; 인산염 완충액(pH = 6.7) 중 요소의 2% 용액; 50% Rochelle 염 용액; 50% CCl 3 COOH 용액(트리클로로아세트산); KC1의 1% 용액; 네슬러 시약; 표준 용액 NH 4 C1.
작업 순서
1. 100cm 3 용량의 플라스크에 공기 건조 토양 5g을 놓고 인산 완충액(pH 6.7)의 2% 요소 용액 20cm 3 및 톨루엔 200μl를 추가합니다.
2. 플라스크를 단단히 닫고 4시간 동안 37°C의 항온조에 넣습니다.
3. 노출 후 50% 트리클로로아세트산 용액 1 cm 3 를 추가합니다.
4. 토양에서 흡수된 암모니아를 대체하기 위해 1N의 50cm3를 추가합니다. 염화칼륨 용액.
5. 플라스크의 내용물을 여과합니다.
6. 여액 2cm 3 를 부피 50cm 3 의 메스플라스크에 넣고 물로 30cm 3 까지 희석한 다음 50% Rochelle 염 용액 2cm 3 와 Nessler 시약 2cm 3 를 추가합니다. 플라스크에 표시까지 물을 채우고 400 nm 파장에서 유색 용액을 혼합하고 측색한다.
8. 요소분해효소 활성을 계산합니다.
9. 표에 따르면 15 우레아제로 연구된 토양의 포화 정도를 추정합니다.
데이터 처리
요소분해효소(X)의 활성은 다음 공식에 따라 4시간 동안 토양 1g당 N-NH 4 밀리그램으로 표시됩니다.
V는 여액의 총 부피, 50cm 3입니다.
m - 토양 샘플, 5g.
독학 질문:
1. 카탈라아제 활성이란 무엇입니까?
2. 인버타제 활성의 정의를 제공하십시오.
3. 요소분해효소 활성을 설명합니다.
4. 완충제 혼합물이란 무엇입니까?
5. 토양 효소의 활성을 결정하는 방법의 원리와 본질.
6. 토양 샘플링 방법.
부록
표 1 - 유기체의 대략적인 목록 - saprobity 지표
| 유기체 | 사프로비티 |
| 사상균: | |
| 스페로틸러스 나탄스 | NS |
| 베지아토아 sp. | NS |
| 티오트릭스 sp. | NS |
| 버섯: | |
| 렙토미투스 락테우스 | α |
| 점액 라세모수스 | α |
| 푸사리움 수족관 | NS |
| 해초: | |
| 청록색: | |
| 아나바에나 플로스 아쿠아 | β |
| Microcystis aeruginosa | β |
| Aphanizomenon flos aquae | β |
| 오실레이터라 테누이스 | α |
| 규조류 | - |
| 심벨라 체사티 | 영형 |
| 움포네마 세블리 | 영형 |
| 메로스트라과립 | β |
| 나비큘라 안구스타타 | α |
| 나비큘라 아피쿨라타 | α |
| 시네드라 에쿠스 | β |
| 시네드라 척골 | β |
| 니치아 팔레아 | α |
| 유글레나: | |
| 유글레나 아쿠스 | β |
| 유글레나 비리디스 | NS |
| 유글레나 데스 | α |
| 녹색 및 프로토콜: | |
| 볼복스 글로베이터 | o-β |
| 안키스트로데스무스 팔카투스 | β-α |
| 십자형 직육면체 | α-β |
| 세네데스무스 콰드리카우다 | β |
| 드라파르날디아 sp. | 영형 |
| 울로스릭스 조나타 | 영형 |
| Stlgeoclonium 테뉴 | α |
| 동물: | |
| 아메바: | |
| Pelornyxa palustris | NS |
| 유기체 | 사프로비티 |
| 섬모: | |
| 콜피디움, 캄필룸 | NS |
| Colpldlum colpoda | NS |
| 유플로테스 카론 | β |
| 클로돈 쿠쿨루스 | NS |
| 오페큘라리아 코아레타타 | α |
| Paramecium caudatum | α |
| 스피로스토뭄 앰블굼 | α |
| 강청강 | α |
| 보르첼라 콘발라라 | α |
| 보르티셀라 마이크로스토마 | NS |
| 포도프리아 픽사 | α |
| 로티퍼: | |
| Kellcottia longispina (동의어 Notholca Iongispina) | 영형 |
| 각질 와우 | β |
| 케라텔라 쿼드라타 | β |
| Leucane lunarls (동의어 Monostyla lunarls) | β |
| Rotaria rotatoria (동의어 Rotifer vulgaris) | α |
| 올리고당: | |
| 림노드릴루스 호프멜스털 | NS |
| 전 tublfex의 경우 욕조 | NS |
| 스타일라라 라쿠스트리스 | β |
| 갑각류: | |
| 다플라 마그나 | α |
| 물벼룩 | α |
| 렙토도라 킨틀리 | 영형 |
| Eudiaptomus gracilis | 영형 |
| 아스타쿠스 플루비아틸리스 | 영형 |
| 곤충: | |
| 캉스 마크루라 | 영형 |
| 헵타게니아 코에룰라나 | β |
| 키로노무스 플루모수스 | NS |
| 생선: | |
| 브림: | β |
| 수염 | β |
| 송어 | 영형 |
| 텐치 | β-α |
표 2 - 주파수당 100개 필드의 유기체를 재계산하기 위한 주파수 척도
| 주파수 값 | 미생물 | 오염 | |
| 데이터 계산 | 100개 필드의 합계 | ||
| 거칠기의 첫 번째 범주 | |||
| 각 2번째 시야에 1개 이하 시야에 2개 이하 시야에 10개 이하 시야에 30개 이하 시야에 60개 이하 시야에 60개 이상 시야 | 각 2번째 시야에 1개 이하 시야에 2개 이하 시야에 10개 이하 시야에 50개 이하 시야에 250개 이하 시야에 250개 이상 시야 | 1-50 50-200 200-1000 1000-5000 5000-25000 25000 이상 | |
| 거칠기의 두 번째 범주 | |||
| 20번째 시야마다 1개 이하 5번째 시야마다 1개 이하 시야에서 1개 이하 시야에서 3개 이하 시야에서 6개 이하 6개 초과 시야에서 | 시야 20개 중 2개 이하 시야 5개 중 1개 이하 시야 1개 이하 시야 5개 이하 시야 25개 이하 시야 25개 이상 시야 | 1-5 6-20 21-100 100-500 500-2500 2500 이상 | |
| 거칠기의 세 번째 범주 | |||
| 시야 100개 중 1개 시야 50개 중 1개 시야 10개 중 최대 1개 시야 4개 중 최대 1개 시야 2개 중 최대 1개 시야 2개 중 최대 1개 시야 약 1개 | 시야 100개 중 1개 시야 50개 중 1개 시야 10개 중 1개 시야 2개 중 1개 시야에서 2개 이하 시야 2개 이상 | 3-10 10-50 50-200 200명 이상 |
애플리케이션
표 13. 빈도 값에 대한 정량적 회계 결과의 재계산
애플리케이션
saprobity 계산의 예
샘플: 도시 아래의 강. 날짜 ________________ 커뮤니티: 오염.
| 유기체 | NS | NS | sft |
| 유글레나 비리디스 | NS | ||
| Scenedesmus acuminatus | β | ||
| 스피로자이라 | β | ||
| 클로스테리움 아세로섬 | α | ||
| 클로스테리움 모닐리에룸 | β | ||
| 사이클로텔라 메넨지아나 | α | ||
| 심벨라 수포 | β | ||
| 규조류 | β | ||
| 멜로시라 이탈리카 | β | ||
| 멜로시라 바리안스 | β | ||
| 나비큘라 크립토케팔라 | α | ||
| 나비쿨라 비리두아 | α | ||
| Nitzschia acicularis | β | ||
| 니치아 팔레아 | α | ||
| 수리렐라 오바타 | β | ||
| 칠리도넬라 쿠쿨라타 | α | ||
| 콜포다 쿠쿨루스 | α | ||
| 쉬 = 41 | S(쉬) = 103 |
쉬 p = 3; 쉬 α = 15; 쉬 β = 23.
S = S(쉬) / (쉬) -103 / 41 = 2.51 /
오류 계산:
통계적 신뢰도의 정확도 구간은 95%입니다.
S = s ± t 0.05 s S = 2.51 ± 2.02 × 0.1;
비슷한 정보입니다.
