Probleme reale ale studiilor pedagogice moderne. Probleme reale ale cercetării pedagogice

După tipul de reacții catalizate, toate enzimele cunoscute sunt împărțite în șase clase:

1. Oxidoreductază, reacție de oxidare catalizantă.

2. Hidrolaze, reacții de catalizare de scindare hidrolitică a legăturilor intramoleculare în diferite conexiuni.

3. Transferaze, reacții de catalizare de transfer intermolecular sau intramolecular al grupului chimic și reziduuri cu transferul simultan de energie încheiat în obligațiuni chimice.

4. Ligaze (sintetaze), reacții de catalizare ale compusului de 2 molecule, conjuga cu despicarea legăturilor fidiofosfat ale ATP sau alt triffosfat similar.

5. Piesele de catalizare a catalizării de scindare non -grolitice sau atașarea diferitelor grupe chimice de compuși organici pentru duble legături.

6, izomerază, reacții catalizante ale conversiei compușilor organici în izomerii lor.

Oxidoreductazele și hidrolazele sunt larg răspândite în sol, care sunt foarte importante în biodinamica solului.

Catalază

(H202: H20 2-oxidoreductază)

Catalazul catalizează reacția de descompunere a peroxidului de hidrogen pentru a forma apă și oxigen molecular:

H2O2 + H202O2 + N2O.

Peroxidul de hidrogen se formează în procesul de respirație a organismelor vii și ca rezultat al diferitelor reacții biochimice de oxidare a substanțelor organice. Toxicitatea peroxidului de hidrogen este determinată de reactivitatea ridicată, care prezintă un singur oxigen, * O 2. Reactivitatea ridicată duce la reacții de oxidare necontrolate. Rolul catalazei este că distruge otrăvitoare pentru organismele de peroxid de hidrogen.

Catalaza este larg răspândită în celulele organismelor vii, inclusiv microorganismele și plantele. Activitatea de catalație ridicată este, de asemenea, prezentată sol.

Metodele de determinare a activității catalazului solului se bazează pe măsurarea ratei de decădere a peroxidului de hidrogen atunci când interacționează cu solul în termeni de oxigen eliberată (metode gazometrice) sau cu cantitatea de peroxid increditat, care este determinat prin titrarea permanentanateometrometrică sau colorimetrică metodă cu formarea complexelor vopsite.

Cercetare E.V. Dentenko și k.sh. Casev a fost stabilit că atunci când stochează eșantioane, activitatea catalazei din toate enzimele este redusă în cea mai mare măsură, prin urmare, definiția sa trebuie efectuată în prima săptămână după eșantionare.

Metoda Ash. Galest.

Cursul analizei. Pentru a determina activitatea catalazei, se utilizează dispozitivul din cele două burete de furtun din cauciuc conectat, care sunt umplute cu apă și echilibrează nivelul acestuia. Menținerea unui anumit nivel de apă din Burette indică realizarea echilibrului de temperatură în dispozitiv. Jacheta (1 g) a solului este adusă la una dintre separările balonului pitic. O soluție de 5 ml de soluție de pericol de hidrogen 3% este turnată într-o altă separare a balonului. Balonul este închis strâns cu un tub de cauciuc cu un tub de sticlă, care este conectat la biroul de măsurare folosind un furtun de cauciuc.

Experiența se efectuează la o temperatură de 20 ° C, deoarece la o temperatură diferită, rata de reacție va fi diferită de faptul că denaturează rezultatele. În principiu, temperatura nu este importantă, iar peroxidul, acesta trebuie să fie 20 0 C. Dacă temperatura aerului este semnificativ mai mare de 20 0 S (în timpul verii), se recomandă analiza în subsol sau într-un altul diferit Cameră rece. Recomandat în astfel de cazuri, utilizarea băii de apă cu o temperatură de 20 ° C este puțin probabilă în mod eficient.

Începutul experienței este notat în cronometrul sau în sandwheel în momentul în care peroxidul este amestecat cu solul și conținutul se agită. Blinding Amestecul este produs în întreaga experiență, încercând să nu atingă baloanele cu mâinile, ținându-l pentru ștecher. Oxigenul eliberat deplasează apa de la Burette, a cărei nivel este notat după 1 și 2 minute. Recomandare Pentru a determina cantitatea de oxigen la fiecare minut timp de 3 minute datorită recepției reacției descompunerii peroxidului, numai crește timpul petrecut pe analiză.

Această tehnică permite unui cercetător să analizeze activitatea catalazei mai mult de 100 de mostre pe zi. Este convenabil să analizăm primul, folosind 5-6 vase. În același timp, o persoană este implicată direct în analiză și monitorizează nivelul Buretei, iar al doilea urmează timpul, scrie datele și spală navele.

Controlul servește ca sterilizat cu căldură uscată (180 ° C) sol. Unele soluri, compușii și mineralele au o activitate ridicată de descompunere a catalizei anorganice a peroxidului, chiar și după sterilizare - până la 30-50% din totalul activității.

Activitatea catalazei este exprimată în mililitri de 2, eliberat în 1 min de 1 g de sol.

Reactivi: 3% soluție H202. Concentrația de perhhhydra este verificată în mod periodic, soluția de lucru este pregătită imediat înainte de analiză. Pentru a stabili o concentrație de perhidron pe cântarele analitice într-un balon dimensional cu o capacitate de 100 ml cântărit 1 G202, volumul este ajustat la etichetă și undă. Sunt plasate 20 ml din soluția rezultată în baloane conice pe 250 ml (3 repetări), se adaugă 50 ml apă distilată și 2 ml de 20% H2S04. Apoi titrate 0,1 n. Soluția KMNO 4. 1 ml de soluție KMNO 4 corespunde la 0,0017008 g H202. După stabilirea concentrației de perhidrol, o soluție de 3% este preparată prin diluarea cu apă distilată. Soluția CMNO 4 Titer este preparată din fixanal și rezistă la câteva zile pentru a stabili titrul.

Dehidrogenaza

(Substrat: peste (f) -oxidoreductază).

Dehidrogenază catalizează reacțiile de oxidare prin dehidrogenarea substanțelor organice. Ei trec pe următoarea schemă:

Un 2 + în A + VN 2

În sol, substratul de dehidrogenare poate fi compuși organici nespecificați (carbohidrați, aminoacizi, alcooli, grăsimi, fenoli etc.) și specifici (substanțe humus). Dehidrogenaze în reacțiile de reacție oxidativă funcționează ca purtători de hidrogen și sunt separați în două grupe: 1) aerobă, transmiterea aerului de hidrogen mobilizat mobilizat; 2) anaerobic, care transmit hidrogen altor acceptori, enzime.

Principala metodă de detectare a dehidrogenazei este restaurarea indicatorilor cu un tip potențial redus de redox albastru de metilen.

Pentru a determina activitatea de dehidrogenaze solului, sărurile incolore de tetrazolie (2,3,5-trifeniltetrazoliu - clorură de clorură) sunt utilizați ca hidrogen, care sunt restaurate la compușii roșii ai Formasanov (Trifenil Formasan - TFF).

Cursul analizei. Suspensia (1 g) a solului preparat cu pâlnie este plasată pe fundul tubului cu o capacitate de 12-20 ml și amestecat bine. Se adaugă 1 ml de 0,1 M de soluție de substrat de dehidrogenare (glucoză) și 1 ml de soluție de 1% preparată proaspăt preparată de TTX. Tuburile de testare sunt plasate într-un excitator de anaerostat sau vid. Definiția se efectuează în condiții anaerobe, pentru care aerul este evacuat la o rezoluție de 10-12 mm hg. Artă. Timp de 2-3 minute și puneți într-un termostat timp de 24 de ore la 30 ° C. La incubarea solurilor cu substraturi, nu se adaugă toluen ca antiseptic, deoarece; Inhibă puternic efectul dehidrogenazei. Controlul servește sol sterilizat (la 180 ° C timp de 3 ore) și substraturi fără sol. După incubare în baloane se adaugă 10 ml de alcool etilic sau acetonă, se agită 5 minute. Soluția vopsită rezultată a TFF este filtrată și colorimetrată. Cu o culoare foarte intensă, soluția este diluată cu alcool (acetonă) cu 2-3 ori. Au folosit cuve de 10 mm și un filtru de lumină cu o lungime de undă de 500-600. Cantitatea de formasan în MG este calculată conform unei curbe standard (0,1 mg per 1 ml). Activitatea dehidrogenazei este exprimată în MG TTF pe 10 g de sol în 24 de ore. Definirea erorilor de până la 8%.

Reactivi:

1) soluție 1% de clorură de 2,3,5-trifenilterazolia;

2) soluție de glucoză 0,1 m (18 g de glucoză este dizolvată în 1000 ml de apă distilată);

3) alcool etilic sau acetonă;

4) trifenil formasan pentru scară standard. Pentru a compila o curbă de calibrare, se prepară o serie de soluții în alcool etilic, acetonă sau toluen cu o concentrație de formasan (de la 0,01 la 0,1 mg formasan în 1 ml) și fotocolorimetrată, așa cum s-a descris mai sus.

În absența formasanului, se obține prin restaurarea hidrosulfitei de sodiu TTH (sulfit de amoniu, pulbere de zinc în prezența glucozei). Concentrația inițială a soluției de TTX 1 mg / ml. Hidrosulfit de sodiu cristal este adăugat la 2 ml din soluția inițială de TTX pe vârful lancetului. Precipitatul de formasan este îndepărtat cu 10 ml de toluen. Acest volum de toluen conține 2 mg de formasan (0,2 mg / ml). Alte reproducere pregătește soluții de lucru pentru scară.

Invertav.

(β-fructfuranosidază, zahăr)

Invertaza este carbohidraza, acționează asupra legăturii β-fructducuranosidază în zaharoză, rafinoză, genzenoză etc. Cel mai activ această enzimă hidrolizează zaharoză cu formarea de zaharuri reducătoare - glucoză și fructoză:

invertav.

De la 12 N 22O1 + N20 C 6N 12 O 6 + C 6H 12 O 6

frucoză glicoză zaharoză

Invertaza este larg răspândită în natură și se găsește în aproape toate tipurile de sol. Invertaza de activitate foarte înaltă a fost detectată în solurile din lunca de munte. Activitatea invertatasei se corelează în mod clar cu conținutul de humus și fertilitatea solului. Se recomandă atunci când studiază efectul îngrășămintelor pentru a evalua eficacitatea acestora. Metodele de determinare a activității invertatasei solului se bazează pe contabilitatea cantitativă a zaharurilor de regenerare conform BERRAN și de modificare a proprietăților optice ale soluției zaharoză înainte și după expunerea enzimei. Prima metodă poate fi aplicată atunci când studiază enzima cu o amplitudine foarte largă de activitate și concentrație a substratului. Metodele polarimetrice și fotocolorimetrice sunt mai solicitante la concentrarea zaharurilor și inacceptabile pentru soluri cu conținut ridicat organicunde se obțin soluții vopsite; Prin urmare, aceste metode sunt limitate la studiile de sol.

Scopul lucrării este de a determina activitatea biologică a solului la îndepărtarea diferită de pe șosea în patru sisteme enzimatice: dehidrogenaze, catalaze, invertază, urează.

Noțiuni de bază

Metodele enzimologice sol-enzimologice fac posibilă determinarea conținutului ne-cantitativ al enzimelor din sol, ci activitatea enzimelor care sunt în principal în starea adsorbită (imobilizată) pe suprafața coloidelor de sol și parțial în soluție solului.

Principiul determinării activității enzimelor solului se bazează pe numărul de reacții de reacție prelucrate în timpul reacției sau al produsului de reacție rezultat în condițiile optime de temperatură, pH-ul mediului și concentrația de substraturi.

Enzime legate de clasa de reacții de oxidare a catalizării oxidoreductazei care joacă un rol de lider în procesele biochimice din celulele organismelor vii, precum și în sol. Cele mai frecvente oxido-reductaze cum ar fi catalază și dehidrogenază, a căror activitate este un indicator important al genezei solurilor.

Catalază apa și oxigenul molecular la otrăvire pentru peroxidul de peroxid celular format în procesul de respirație a organismelor vii ca urmare a diferitelor reacții de oxidare biochimică a substanțelor organice.

Activitatea catalazei este determinată de metoda gazometrică în volum de oxigen selectat pe baza măsurării vitezei de descompunere a peroxidului de hidrogen în timpul interacțiunii cu solul.

Dehidrogenaza - enzimele care participă la procesul respirator, netezind hidrogenul de la substraturile oxidate. Unele dehidrogenaze sunt transferate în hidrogen direct pe oxigenul molecular, altele - pe orice acceptor, cum ar fi Hainons, Albastru de metilen.

Pentru a determina activitatea dehidrogenazei ca un acceptor de hidrogen, se utilizează săruri incolore de tetrazolie (clorură de 2,3,5-trifeniltetrazoliu (TTX), care sunt restaurate la compușii roșii ai Formasanului (Trifenil Formasan (TFF).

Hidrolazul efectuează reacțiile de hidroliză ale diferiților compuși organici complexi, care acționează asupra diferitelor conexiuni: esterul complex, amidul de glucozidă, peptida etc. la această clasă includ enzime de invertază, urează etc., a căror activitate este un indicator important al activității biologice a solului și este utilizat pe scară largă pentru a evalua efectele antropice..

Invertaza acționează asupra legăturii p-fructducuranosidei în zaharoză, rafinină, stakhioheea și produce zaharoză pe cantitățile echimolare de glucoză și fructoză.

Determinarea fotocolorimetrică a activității invertazei se bazează pe contabilitatea de restaurare a zaharurilor formate în timpul divizării zaharozei.

Descompunerea compușilor organici de azot este efectuată cu participarea directă a enzimelor extracelulare. Amoniacul format în timpul activității Ureazna servește ca o sursă de nutriție a plantelor.

Ureaz catalizează hidroliza ureei. Produsele finale de hidroliză sunt amoniac și dioxid de carbon. Ureea se încadrează în sol ca parte a reziduurilor de plante, gunoi de grajd și ca îngrășământ azot; Se formează, de asemenea, în solul însuși ca produs intermediar în procesul de transformare a compușilor organici azotați - proteine \u200b\u200bși acizi nucleici.

Determinarea activității catalazului

Echipamente și reactivi:

Sistem de gasometrie (fig.8); 10% soluție H202; Saco er.

Smochin. 8 - Instalarea pentru determinarea gazometrică a activității catalazei în probele de sol:

1 - Balk, 2 - Burette, 3 - Adaptor, 4 - Pear cu apă

Procedura de efectuare a muncii

1. Partea a solului SIFTED 1 G Adăugați la balon la 100 cm3, adăugați 0,5 g de Casso 3.

2. Pentru a fi pus cu grijă cu un tweezet, o ceașcă mică cu 1,7 cm3 10% soluție de peroxid de hidrogen.

3. Proba de sol MOOF 4 cm3 apă distilată.

4. Balonul este strâns în apropierea tubului de cauciuc cu un tub conectat la o biuretă de cauciuc cu pereți groși printr-un tee echipat cu o clemă. Bureta este comunicată cu o pere. Buretele și perele sunt umplute cu apă. Nivelul apei din ele este echilibrat și pere este fixat la o anumită înălțime.

5. Începutul experienței de note într-un cronometru în momentul în care vascularul cu peroxid de hidrogen este răsturnat și urmând acest lucru, agitați conținutul balonului. Blinding Amestecul trebuie continuat în orice moment de experiență, fără a atinge partea de jos a balonului direct. Oxigenul excreasing deplasează apă de la Burette, a cărui nivel este notat.

6. Cantitatea de oxigen molecular evidențiat este luată în considerare timp de 1 min la o temperatură de 18-20 ° C.

7. Activitatea catalazei este exprimată în volum (cm3) de oxigen evidențiată de 1 g de sol pe minut. Definirea erorilor de până la 5%.

8. Proceduri similare legate de toate probele de sol.

9. Tabelul. 15 Evaluați gradul de saturație a solurilor catalazei .

Masa 15 ‑ Scară pentru evaluarea gradului de îmbogățire a enzimelor solului

Gradul de înscriere a solurilor	Catalaza, 2 cm 3 / g pe 1 min	Dehidrogenază, mg tff timp de 10 g timp de 24 de ore	Invertaza, mg glucoză la 1 g în 24 de ore	Ureaza, mg NH4, 10 g timp de 24 de ore	Fosfos, mg p 2 o 3 per 10 g pe 1 oră
Foarte sarac	< 1	<1	<5	<3	<0,5
Săraci	1-3	1-3	5-15	3-10	0,5-1,5
In medie	3-10	3-10	15-50	10-30	1,5-5,0
Bogat	10-30	10-30	50-150	30-100	5-15
Foarte bogat	>30	>30	> 150	> 100	> 15

Definiția activității dehidroginazei

Dispozitive, vase, reactivi:

Fotocolorimetru; hârtie milimetrică; Soluție de glucoză 0,1 m; 1% soluție de clorură de 2,3,5-trifenilterazolie (TTX); SASO 3; etanol; Trifenylformazan (TFF).

Procedura de efectuare a muncii

1. Așezați solul uscat de aer timp de 1 g din fiecare probă în tubul de testare, se adaugă 10 mg (la vârful spatulei) SACO 3, 1 cm3 0,1 m soluție de glucoză și o soluție TTX de 1 cm 3 1%; Conținutul fiecărui tub de testare este bine amestecat.

2. Puneți tuburile de testare într-o anaerostat și pompează pompa de aer la o rezoluție de 10-12 mm hg. Artă. Timp de 2-3 minute. Apoi se incubează la 30 0 S timp de 24 de ore.

3. După expirarea timpului de incubare, conținutul tuburilor este extras în 3-4 recepționarea alcoolului etilic de 25 cm3. Pentru a face acest lucru, se adaugă o cantitate mică de alcool la tubul de testare și se agită timp de 5 minute până când apare culoarea roșie. Dați-i să stea și lichidul pentru a fi filtrat printr-un filtru de hârtie. Adăugați următoarea porțiune de alcool la tubul de testare.

4. Soluția vopsită rezultată din Formasan este colorimetrată pe FEC cu un filtru de lumină albastră (500-600 nm).

5. Cantitatea de formasan din miligrame pentru a calcula în conformitate cu curba standard. Pentru aceasta, pregătiți o soluție standard de formasan în alcool etilic la o concentrație de 0,1 mg în 1 cm3. Soluții de lucru pentru compilarea curbei de pregătire prin diluții ale unei soluții standard (aproximativ 5 puncte). Curba standard pentru a construi pe hârtie milimetru în sistem: densitatea optică la o lungime de undă de 500-600 nm - concentrația de formasan în alcool.

6. Calculați activitatea dehidrogenazei. Masa. 15 Evaluați gradul de saturație a solului dehidrogenazei studiate.

Procesarea datelor

Activitatea dehidrogenazei (X) este exprimată în miligramele TFF pe 10 g de sol pe zi cu formula:

unde v este volumul total al filtratului, 25 cm3;

10 - Coeficientul de greutate a solului estimat, G;

v este produsul de substrat și volume de reactiv, 1 cm3;

A este cantitatea de TFF, obținută în conformitate cu curba de calibrare, mg / cm3. Eroare de definire - până la 8%.

Determinarea activității invertale

Dispozitive, vase, reactivi:

Fotocolorimetru; 5% soluție de zaharoză; Tampon de acetat (pH 4,7); toluen; Soluție de tăiere: A - 40 g CUSO 4 × 5N2O este dizolvată în apă și ajustată la 1 DM3, filtrată printr-un filtru de hârtie, B - 200 g de sare ferronetică (C4H4O6 KNA × 4N 2 O ) este dizolvat în apă distilată adăugați 150 g con și ajustați la 1 dm 3

Procedura de efectuare a muncii

1. În flacoanele cu o capacitate de 50 cm3 redați 5 g din fiecare probă de sol, se adaugă 10 cm3 5% soluție zaharoză, 10 ml tampon de acetat (pH 4,7) și 5-6 picături de toluen.

2. Verificarea închideți plușele, se agită, introdus într-un termostat la o temperatură de 30 ° C pe 24 de ore și se agită periodic.

3. După incubare, conținutul balonului este filtrat în baloane dimensionale cu 25 cm3. Aduceți la etichetă.

4. Din filtrate pentru a lua 6 cm3 până la tuburi mari, se adaugă 3 cm3 de sare de separare și o soluție de 3 cm3 de sulf de cupru, se amestecă bine și se fierbe pe o baie de apă timp de 10 minute. Se pare un precipitat roșu.

5. Tuburi răcoroase cu o soluție în apă, conținutul este filtrat în tuburi mari. Filtratul transparent este colorimetrat pe FEC utilizând un filtru de lumină cu o lungime de undă de 630 nm, o lățime cuvetă de 1 cm.

6. Pentru a obține o curbă de calibrare, se prepară o soluție standard: 6 mg de glucoză în 1 cm3. Reproducere pentru a pregăti o serie de soluții. Fotocolorimetrate și construirea unei curbe: densitatea optică - concentrația de glucoză de 1 cm3.

7. Calculați activitatea și tabelul. 15 Estimați gradul de saturație a solurilor investigate.

Procesarea datelor

Activitatea invertatasei (X) este exprimată în miligrame de glucoză cu 1 g sol în 24 de ore cu formula:

unde A este cantitatea de glucoză obținută în conformitate cu curba de calibrare a densității optice, mg / cm3;

m - Ascunderea solului, 5 g;

V este volumul total al filtratului, 25 cm3;

v Este volumul filtratului luat pentru analiză, 6 cm3.

Eroare de definire - până la 5%.

Determinarea ureazului de sol

Dispozitive, vase, reactivi:

Fotocolorimetru; Soluție de uree 2% în tampon fosfat (pH \u003d 6,7); 50% soluție de sare ferronetică; 50% soluție CCI3 COOH (acid tricloracetic); Soluție 1% a KS1; Reactivul nesterului; Soluție standard NH4C1.

Procedura de efectuare a muncii

1. în 5 g de sol uscat cu aer, pus într-un balon cu o capacitate de 100 cm3, turnând 20 cm3 2% din soluție de uree în tampon fosfat (pH 6,7) și 200 pl de toluen.

2. Flacoanele sunt închise strâns și plasate într-un termostat la o temperatură de 37 ° C timp de 4 ore.

3. După expunere, se toarnă 1 cm3 50% soluție de acid tricloracetic.

4. Pentru a deplasa din solul amoniacului absorbit, adăugați 50 cm3 1 n. Soluție de clorură de potasiu.

5. Conținutul filtrului balonului.

6. 2 cm3 filtrate loc în baloanele dimensionale de 50 cm3, pentru a se dizolva la apă de până la 30 cm3, apoi se toarnă 2 cm3 50% din sarea ferronetică și 2 cm3 a reactivului non-salarial. Flacoanele se fixează cu apă pe etichetă, se amestecă și soluția vopsită sunt colorimetrate la o lungime de undă de 400 nm.

8. Calculați activitatea ureazei.

9. Tabelul. 15 Estimați gradul de saturație a solurilor studiate de Ureta.

Procesarea datelor

Activitatea ureazei (X) este exprimată în miligramele N-NH4 per 1 g de sol în 4 ore cu formula:

V este volumul total al filtratului, 50 cm3;

m - sol de șlefuire, 5 g

Întrebări pentru auto-pregătire:

1. Ce este activitatea catalazei?

2. Dați unificarea activității invertale.

3. Descrieți activitatea Ureazny.

4. Ce este un amestec tampon?

5. Principiul și esența metodei de determinare a activității enzimelor solului.

6. Metoda de eșantionare a solului.

Aplicații

Tabelul 1 - Lista exemplară a organismelor - indicatori trist

Organisme.	Tristeţe
Bacterii nicy:
Sphaerotilus natans.	R.
Beggiatoa sp.	R.
Thiothix sp.	R.
Ciuperci:
Leptomitus Lacteus.	α
Mucor racemosus.	α
Fusarium Aquactum.	R.
Alge:
Albastru verde:
Anabaena Flos Aquae.	β
Microcystis aeruginosa.	β
Apanzomenon FLOS AQUAE.	β
Oscilatorla tenuis.	α
Diatomes.	-
Cymbella CESATI.	despre
Oomphonema Cevli.	despre
Melostra Granulata.	β
Navicula angustata.	α
Navicula apiculata.	α
Synedra Acus.	β
Synedra Ulna.	β
Nitzschia Palea.	α
Evglen:
Euglena Acus.	β
Euglena viridis.	R.
Euglene Deses.	α
Verde și transferuri:
Volvox globator.	O-p
Ankistrodesmus falcatus.	β-α
Crucigenta dreptunghiulară.	A-p
Scenedesm quadricauda.	β
Draparnaldia sp.	despre
Ulothrix Zonata.	despre
STLGEOCLONIUM TENUE.	α
Animale:
Amobe:
Pelornyxa palustris.	R.

Organisme.	Tristeţe
Infuzorii:
Colpidiu, Campylum.	P.
Colpldlum colpoda.	P.
Euplotes Charon.	β
Chllodon Cuculululus.	P.
Opercularia Coaaretata.	α
Paramecium caudatum.	α
Spirosomum amblguum.	α
St.entor coeruleus.	α
Vortlcella Convallarla.	α
Vorticella microstoma.	P.
Podofrya Fixa.	α
Becovanții:
Kellcotia Longispina (Syn. Notholca Iongispina)	despre
Keratella cohlearls.	β
Keratella Quadrata.	β
Leucane Lunarls (Syn. Monostyla Lunarls)	β
Rotaria Rotatoria (Syn. Rotifer vulgaris)	α
Uleiuri:
Limnodrilus Hofmelsterl.	P.
Dacă ex tublfex	P.
Stylarla Lacustris.	β
crustacee:
Daplmla Magna.	α
Daphnla Plex.	α
Leptodora Kindtli.	despre
Eudiaptomus Gracilis.	O.
Astacus fluviatilis.	O.
Insecte:
Caenls macrra.	O.
Heptagenia coerulana.	β
Chironomus plumosus.	R.
peşte:
BREAM:	β
Barbel	β
păstrăv	O.
lin	β-α

Tabelul 2 - Scala de frecvență pentru a recalcula organismele din 100 de câmpuri pe frecvență

Valoarea frecvenței	Microbentos.	Atașament
Numărarea datelor	Suma în 100 de câmpuri
Prima categorie de dimensiuni
	Nu mai mult de 1 în fiecare câmp de vizualizare a doua nu mai mult de 2 în vederea nu mai mult de 10 în domeniul de vedere nu mai mult de 30 în domeniul de vedere nu mai mult de 60 în domeniul de vedere mai mult de 60 în vedere	Nu mai mult de 1 în fiecare domeniu de vizualizare 2 în câmpul de vizualizare nu mai mult de 10 în vederea nu mai mult de 50 în domeniul de mai mult de 250 în domeniul de mai mult de 250 de puncte	1-50 50-200 200-1000 1000-5000 5000-25000 mai mult de 25.000
Categoria a doua de dimensiune
	Nu mai mult de 1 în fiecare câmp de vedere nu mai mult de 1 în fiecare câmp de vedere al 5-lea nu mai mult de 1 în câmpul de vedere nu mai mult de 3 în vederea nu mai mult de 6 în vederea a mai mult de 6 în vedere	Nu mai mult de 2 în 20 de domenii de viziune nu mai mult de 1 în 5 câmp de vedere nu mai mult de 1 în vederea nu mai mult de 5 în domeniul de vedere nu mai mult de 25 de mai mult de 25 de ani	1-5 6-20 21-100 100-500 500-2500 mai mult de 2500
Categoria a 3-a dimensiune
	1 din 100 de domenii de vedere 1 în 50 de câmpuri de vedere nu mai mult de 1 din 10 câmpuri de viziune nu mai mult de 1 din 4 câmpuri de viziune nu mai mult de 1 în 2 domenii de vedere aproximativ 1 în vizualizare	1 în 100 de domenii de vedere 1 în 50 de câmpuri de vizibilitate nu mai mult de 1 din 10 în domeniul vizualizării 1B2 câmpuri de vedere nu mai mult de 2 în vederea mai mult de 2 în vizualizare	3-10 10-50 50-200 Mai mult de 200

aplicație

Tabelul 13. Recalcularea rezultatelor contabilității cantitative la valoarea frecvenței

aplicație

Exemplu de calcul a eșantionării

Exemplu: râul sub oraș. Data ________________ Comunitate: Postul.

Organisme.	s.	h.	SFT.
Euglena viridis.	P.
Sceneesmus acuminatus.	β
Spirorogyra sygmoidea.	β
Closperium Acerosum.	α
Disputerum moniliierum.	β
Cyclotella Menenguiana.	α
Cymbella vesiculosa.	β
Diatoma Vulgare.	β
Melosira Italica.	β
Melosira Varians.	β
Navicula Cryptocephala.	α
Navicula virida.	α
Nitzschia acicularis.	β
Nitzschia Palea.	α
Surirella Ovata.	β
Chilidonella Cuculata.	α
Colpoda Cuculus.	α
		SH \u003d 41.	S (sh) \u003d 103

Sh p \u003d 3; Sh α \u003d 15; Sh β \u003d 23.

S \u003d s (s (sh) / (sh) -103 / 41 \u003d 2,51 /

Calculul erorilor:

Interval de precizie pentru fiabilitatea statistică 95%.

S \u003d S ± T 0,05 S S \u003d 2,51 ± 2,02 × 0,1;

Informații similare.