Актуальні проблеми сучасних педагогічних досліджень. Актуальні проблеми педагогічних досліджень
За типом каталізуються реакцій всі відомі ферменти розділені на шість класів:
1. Оксидоредуктази, що каталізують окислювально-відновні реакції.
2. Гідролази, що каталізують реакції гідролітичного розщеплення внутрішньомолекулярних зв'язків у різних з'єднаннях.
3. Трансферази, що каталізують реакції міжмолекулярної або внутримолекулярного перенесення хімічної групи і залишків з одночасним перенесенням енергії, укладеної в хімічних зв'язках.
4. Лігази (синтетази), що каталізують реакції з'єднання двуx молекул, зв'язаних з розщепленням фірофосфатних зв'язків АТФ або іншого аналогічного трифосфата.
5. Ліази, каталізують реакції негідролітіческім відщеплення або приєднання різних хімічних груп органічних сполук по подвійних зв'язках.
6, Ізомерази, що каталізують реакції перетворення органічних сполук в їх ізомери.
У грунті широко поширені і досить докладно вивчені оксидоредуктаз і гідролази, що мають дуже важливе значення в грунтової біодинаміці.
каталаза
(Н 2 О 2: Н 2 О 2 -оксідоредуктаза)
Каталаза каталізує реакцію розкладання перекису водню з утворенням води і молекулярного кисню:
Н 2 О 2 + Н 2 О 2 О 2 + Н 2 О.
Перекис водню утворюється в процесі дихання живих організмів і в результаті різних біохімічних реакцій окислення органічних речовин. Токсичність перекису водню визначається його високою реакційною здатністю, яку проявляє синглетний кисень, * О 2. Його висока реакційна здатність призводить до неконтрольованих реакцій окислення. Роль каталази полягає в тому, що вона руйнує отруйну для організмів перекис водню.
Каталаза широко поширена в клітинах живих організмів, в тому числі мікроорганізмів і рослин. Високу каталазну активність проявляють також грунту.
Методи визначення каталазной активності грунту засновані на вимірюванні швидкості розпаду перекису водню при взаємодії її з грунтом за обсягом виділяється кисню (Газометріческіе методи) або за кількістю неразложенном перекису, яке визначають перманганатометріческім титруванням або колориметричним методом з утворенням забарвлених комплексів.
Дослідженнями Є.В. Даденков і К.Ш. Казеева встановлено, що при зберіганні зразків активність каталази з усіх ферментів знижується в найбільшою мірою, тому її визначення необхідно проводити в перший тиждень після відбору зразків.
Метод А.Ш. Галстян
Хід аналізу. Для визначення активності каталази використовують прилад з двох з'єднаних гумовим шлангом бюреток, які заповнюють водою і врівноважують її рівень. Підтримування певного рівня води в Бюретка свідчить про досягнення температурного рівноваги в приладі. Наважку (1 г) грунту вносять в одне з відділень здвоєною колби. В інше відділення колби додають 5 мл 3-процентного розчину перекису водню. Колбу щільно закривають каучукової пробкою зі скляною трубкою, яка з'єднана з вимірювальної бюреткою за допомогою гумового шланга.
Дослід проводять при температурі 20 ° С, так як при іншій температурі швидкість реакції буде відрізнятися, що спотворить результати. В принципі важлива температура не повітря, а перекису, саме вона повинна бути 20 0 С. Якщо температура повітря значно вище 20 0 С (влітку), рекомендується проводити аналіз в підвалі або в іншому прохолодному приміщенні. Рекомендоване в таких випадках застосування водяної бані з температурою 20 ° С навряд чи ефективно.
Початок досвіду відзначають за секундоміром або пісочним годинником в той момент, коли перекис змішується з грунтом, і вміст посудини струшують. Збовтування суміші виробляють протягом всього досвіду, намагаючись не торкатися колби руками, тримаючи її за пробку. Вирізняється кисень витісняє з бюретки воду, рівень якої відзначають через 1 і 2 хв. Рекомендація визначати кількість кисню через кожну хвилину протягом 3 хв через прямолінійності реакції розкладання перекису лише збільшує витрати часу на аналіз.
Дана методика дозволяє одному досліднику за день проаналізувати активність каталази більш ніж 100 зразків. Зручно проводити аналіз удвох, використовуючи 5-6 судин. При цьому одна людина безпосередньо займається аналізом і стежить за рівнем бюретки, а другий стежить за часом, записує дані і миє посуд.
Контролем служить стерилізована сухим жаром (180 ° С) грунт. Деякі грунту, з'єднання і мінерали мають високу активність неорганічного каталізу розкладання перекису навіть після стерилізації - до 30-50% від загальної активності.
Активність каталази виражають у мілілітрах О2, що виділяється за 1 хв з 1 г грунту.
Реактиви: 3-відсотковий розчин Н 2 О 2. Концентрацію пергидроля обов'язково періодично перевіряють, робочий розчин готують безпосередньо перед аналізом. Для встановлення концентрації пергідролю на аналітичних вагах в мірній колбі ємністю 100 мл зважують 1 г Н 2 О 2, об'єм доводять до мітки і збовтують. Поміщають 20 мл отриманого розчину в конічні колби на 250 мл (3 повторності), додають 50 мл дистильованої води і 2 мл 20-відсоткової Н 2 SO 4. Потім титрують 0,1 н. розчином КМnО 4. 1 мл розчину КМnО 4 відповідає 0,0017008 г Н 2 О 2. Після встановлення концентрації пергідролю готують 3-відсотковий розчин розведенням дистильованою водою. Тітровальний розчин КМnО 4 готують з фіксанала і витримують кілька днів для встановлення титру.
дегідрогенази
(Субстрат: НАД (Ф) -оксідоредуктази).
Дегідрогенази каталізують окислювально-відновні реакції шляхом дегідрування органічних речовин. Вони проходять за наступною схемою:
АН 2 + В А + ВН 2
У грунті субстратом дегідрірованія можуть бути неспецифічні органічні сполуки (вуглеводи, амінокислоти, спирти, жири, феноли і т.д.) і специфічні (гумусові речовини). Дегідрогенази в окисно-відновних реакціях функціонують як переносники водню і поділяються на дві групи: 1) аеробні, передають мобілізований водень кисню повітря; 2) анаеробні, які передають водень іншим акцепторам, ферментам.
Основним методом виявлення дії дегидрогеназ є відновлення індикаторів з низьким редокс-потенціалом типу метиленової сині.
Для визначення активності дегідрогеназ грунту в якості водню застосовують безбарвні солі тетразолия (2,3,5-тріфенілтетразолій хлористий - ТТХ), які відновлюються в червоні з'єднання формазанов (тріфенілформазан - ТФФ).
Хід аналізу. Наважку (1 г) підготовленого грунту акуратно через лійку поміщають на дно пробірки ємністю 12-20 мл і ретельно перемішують. Додають 1 мл 0,1 М розчину субстрату дегідрірованія (глюкоза) і 1 мл свіжоприготованого 1-процентного розчину ТТХ. Пробірки поміщають в анаеростатах або вакуумний ексикатор. Визначення проводять в анаеробних умовах, для чого повітря евакуюють при розрідженні 10-12 мм рт. ст. протягом 2-3 хв і ставлять в термостат на 24 год при 30 ° С. При інкубування грунту з субстратами толуол як антисептик не додають, так як; він сильно пригнічує дію дегидрогеназ. Контролем служать стерилізована грунт (при 180 ° С протягом 3 год) і субстрати без ґрунту. Після інкубації в колби додають 10 мл етилового спирту або ацетону, струшують 5 хв. Отриманий забарвлений розчин ТФФ фільтрують і колориметрируют. При дуже інтенсивної забарвленням розчин розбавляють спиртом (ацетоном) в 2-3 рази. Використовують 10-мм кювети і світлофільтр з довжиною хвилі 500-600 ім. Кількість формазану в мг розраховують за стандартною кривою (0,1 мг в 1 мл). Активність дегідрогеназ висловлюють в мг ТТФ на 10 г грунту за 24 год. Помилка визначення до 8%.
реактиви:
1) 1-процентний розчин 2,3,5-тріфенілтетразолій хлористого;
2) 0,1 М розчин глюкози (18 г глюкози розчиняють в 1000 мл дистильованої води);
3) етиловий спирт або ацетон;
4) тріфенілформазан для стандартної шкали. Для складання калібрувальної кривої готують ряд розчинів в етиловому спирті, ацетоні або толуолі з концентрацією формазану (від 0,01 до 0,1 мг формазану в 1 мл) і фотоколоріметріруют, як описано вище.
При відсутності формазану його отримують відновленням ТТХ гідросульфітом натрію (сульфитом амонію, порошком цинку в присутності глюкози). Вихідна концентрація розчину ТТХ 1 мг / мл. До 2 мл вихідного розчину ТТХ додають на кінчику ланцета кристалічний гідросульфіт натрію. Випав осад формазану витягають 10 мл толуолу. У такому обсязі толуолу міститься 2 мг формазану (0,2 мг / мл). Подальшим розведенням готують робочі розчини для шкали.
інвертаза
(Β-фруктофуранозидази, сахараза)
Інвертаза є карбогідраз, вона діє на β-фруктофуранозідазную зв'язок в сахарозі, раффинозу, генціанозе і ін. Найбільш активно цей фермент гідролізує сахарозу з утворенням редукуючих цукрів - глюкози і фруктози:
инвертаза
З 12 Н 22 Про 11 + Н 2 О С 6 Н 12 О 6 + З 6 Н 12 О 6
сахароза глюкоза фруктоза
Інвертаза широко поширена в природі і зустрічається майже у всіх типах грунтів. Дуже висока активність інвертази виявлена \u200b\u200bв гірничо-лугових грунтах. Активність інвертази чітко корелює з вмістом гумусу і грунтовим родючістю. Рекомендується при вивченні впливу добрив для оцінки їх ефективності. Методи визначення активності інвертази грунтів засновані на кількісному обліку відновлюють цукрів по Бертрану і по зміні оптичних властивостей розчину сахарози до і після впливу ферменту. Перший спосіб може бути застосований при вивченні ферменту з дуже широкою амплітудою активності і концентрації субстрату. Поляриметричними і фотоколориметричний способи більш вимогливі до концентрації цукрів і неприйнятні для грунтів з високим вмістом органічної речовини, Де виходять, забарвлені розчини; тому ці методи обмежено застосовуються в ґрунтових дослідженнях.
Мета роботи - визначення біологічної активності грунтів на різній відстані від дороги по чотирьом ферментним системам: дегідрогенази, каталази, інвертаза, уреаза.
Основні поняття
Грунтово-ензимологічні методи дозволяють визначати не кількісна зміст ферментів в грунті, а активність ферментів, що знаходяться переважно в адсорбованому (іммобілізованим) стані на поверхні ґрунтових колоїдів і частково в грунтовому розчині.
Прінціпметода визначення активності ґрунтових ферментів заснований на обліку кількості переробленого в процесі реакції субстрату або утворюється продукту реакції в оптимальних умовах температури, рН середовища і концентрації субстратів.
Ферменти, що відносяться до класу оксидоредуктаз, каталізують окислювально-відновні реакції, які відіграють провідну роль в біохімічних процесах в клітинах живих організмів, а також в грунті. Найбільш поширені в грунтах такі оксидо-редуктази, як каталаза і дегідрогенази, активність яких є важливим показником генезису грунтів.
Каталазаразлагает на воду і молекулярний кисень отруйну для клітини перекис водню, що утворюється в процесі дихання живих організмів в результаті різних біохімічних реакцій окислення органічних речовин.
Активність каталази визначається газометріческіх методом за обсягом виділився кисню, заснованим на вимірі швидкості розкладання перекису водню при її взаємодії з грунтом.
Дегідрогенази - ферменти, які беруть участь в процесі дихання, отщепляя водень від окислюваних субстратів. Одні дегідрогенази переносять водень безпосередньо на молекулярний кисень, інші - на будь-які акцептори, наприклад на хінони, метиленовим синь.
Для визначення активності дегідрогенази в якості акцептора водню застосовують безбарвні солі тетразолия (2,3,5-тріфенілтетразолій хлористий (ТТХ), які відновлюються в червоні з'єднання формазану (тріфенілформазан (ТФФ).
Гідролази здійснюють реакції гідролізу різноманітних складних органічних сполук, діючи на різні зв'язку: складноефірні, глюкозидні амідні, пептидні та ін. До цього класу належать ферменти інвертаза, уреаза та ін., Активність яких є важливим показником біологічної активності грунтів і широко використовується для оцінки антропогенного впливу .
Інвертаза діє на p-фруктофуранозідную зв'язок в сахарозі, рафіноза, стахіоее і виробляє розщеплення сахарози на еквімолярних кількості глюкози і фруктози.
Фотоколориметрическое визначення активності інвертази засноване на обліку відновлюють цукрів, що утворюються при розщепленні сахарози.
Розкладання органічних азотистих сполук здійснюється за безпосередньої участі позаклітинних ферментів. Утворений при уреазной активності аміак служить джерелом живлення рослин.
Уреаза каталізує гідроліз сечовини. Кінцевими продуктами гідролізу є аміак і вуглекислий газ. Сечовина потрапляє в грунт у складі рослинних залишків, гною і як азотне добриво; вона утворюється також в самому грунті в якості проміжного продукту в процесі перетворення азотистих органічних сполук - білків і нуклеїнових кислот.
Визначення каталазной активності
Устаткування і реактиви:
Cистема для газометр (рис. 8); 10% -й розчин Н 2 O 2; СаСО е.
Мал. 8 - Установка для газометріческіх визначення каталазной активності в ґрунтових зразках:
1 - колба, 2 - бюретка, 3 - перехідник, 4 - груша з водою
Порядок виконання роботи
1. Наважку просіяного грунту 1 г внести в колбу на 100 см 3, додати 0,5 г СаСО 3.
2. На дно обережно поставити за допомогою пінцета маленький стаканчик з 1,7 см3 10% -го розчину перекису водню.
3. Наважку грунту змочити 4 см 3 дистильованої води.
4. Колбу щільно закрити каучукової пробкою з трубкою, з'єднаної з бюреткою товстостінним каучуком через трійник, забезпечений затиском. Бюретка повідомляється з грушею. Бюретка і груша заповнені водою. Рівень води в них врівноважують і грушу закріплюють на певній висоті.
5. Початок досвіду відзначити за секундоміром в момент, коли посудину з перекисом водню перекинуть, і слідом за цим струсити вміст колби. Збовтування суміші слід продовжувати в усі час досвіду, не торкаючись безпосередньо дна колби руками. Вирізняється кисень витісняє з бюретки воду, рівень якої відзначають.
6. Кількість виділився молекулярного кисню враховують протягом 1 хв при температурі 18-20 0 С.
7. Активність каталази виражають в обсязі (см 3) кисню, що виділився на 1 г грунту в хвилину. Помилка визначення до 5%.
8. Аналогічні процедури виконати з усіма зразками грунтів.
9. За табл. 15 оцінити ступінь насичення досліджуваних грунтів каталазой .
Таблиця 15 ‑ Шкала для оцінки ступеня обогащенности грунтів ферментами
| Ступінь обогашенності грунтів | Каталаза, О2 см 3 / г за 1 хв | Дегідрогенази, мг ТФФ на 10 г за 24 год | Інвертаза, мг глюкози на 1 г за 24 год | Уреаза, мг NH 4, на 10 г за 24 год | Фосфотаза, мг Р 2 О 3 на 10 г за 1 год |
| дуже бідна | < 1 | <1 | <5 | <3 | <0,5 |
| бідна | 1-3 | 1-3 | 5-15 | 3-10 | 0,5-1,5 |
| Середня | 3-10 | 3-10 | 15-50 | 10-30 | 1,5-5,0 |
| багата | 10-30 | 10-30 | 50-150 | 30-100 | 5-15 |
| дуже багата | >30 | >30 | > 150 | > 100 | > 15 |
Визначення дегідрогіназной активності
Прилади, посуд, реактиви:
фотоколориметр; міліметровий папір; 0,1 розчин глюкози; 1% -й розчин 2,3,5-тріфенілтетразолій хлористого (ТТХ); СаСО 3; етиловий спирт; тріфенілформазан (ТФФ).
Порядок виконання роботи
1. Навішення повітряно-сухого ґрунту по 1 г з кожного зразка помістити в пробірки, додати по 10 мг (на кінчику шпателя) СаСО 3, по 1 см 3 0,1 М розчину глюкози і по 1 см 3 1% -го розчину ТТХ ; вміст кожної пробірки ретельно змішати.
2. Пробірки помістити в анаеростатах і відкачати повітря насосом при розрідженні 10-12 мм рт. ст. протягом 2-3 хв. Потім інкубувати при 30 0 С протягом 24 год.
3. Після закінчення часу інкубації вміст пробірок екстрагувати в 3-4 прийоми 25 см 3 етилового спирту. Для цього невеликий обсяг спирту внести в пробірку і струшувати протягом 5 хв до появи червоного забарвлення. Дати відстоятися і приґрунтовому рідина профільтрувати через паперовий фільтр. Додати в пробірку наступну порцію спирту.
4. Отриманий забарвлений розчин формазану колоріметріровать на ФЕК з синім світлофільтром (500-600 нм).
5. Кількість формазану в міліграмах розрахувати за стандартною кривою. Для цього приготувати стандартний розчин формазану в етиловому спирті в концентрації 0,1 мг в 1 см 3. Робочі розчини для складання кривої приготувати шляхом розведення стандартного розчину (приблизно 5 точок). Стандартну криву побудувати на міліметрівці в системі: оптична щільність при довжині хвилі 500-600 нм - концентрація формазану в спирті.
6. Обчислити активність дегідрогенази. За табл. 15 оцінити ступінь насичення досліджуваних грунтів дегідрогеназ.
Обробка даних
Активність дегідрогенази (X) висловлюють в міліграмах ТФФ на 10 г грунту за добу за формулою:
де V - загальний об'єм фільтрату, 25 см 3;
10 - перерахункових коефіцієнт ваги грунту, г;
v - твір обсягів субстрату і реагенту, 1 см 3;
А - кількість ТФФ, отримане по калібрувальної кривої, мг / см 3. Помилка визначення - до 8%.
Визначення інвертазной активності
Прилади, посуд, реактиви:
фотоколориметр; 5% -й розчин сахарози; ацетатний буфер (рН 4,7); толуол; розчин Фелінга: а - 40 г CuSO 4 × 5Н 2 О розчиняють у воді і доводять до 1 дм 3, фільтрують через паперовий фільтр, б - 200 г сегнетової солі (С 4 H 4 O 6 KNa × 4Н 2 О) розчиняють в дистильованої воді, додають 150 г КОН і доводять до 1 дм 3
Порядок виконання роботи
1. У колби місткістю 50 см 3 помістити по 5 г кожного зразка грунту, додати по 10 см 3 5% -го розчину сахарози, 10 мл ацетатного буфера (рН 4,7) і 5-6 крапель толуолу.
2. Колби закрити пробками, струснути, помістити в термостат при температурі 30 0 С на 24 год і періодично струшувати їх.
3. Після інкубації вміст колб відфільтрувати в мірні колби на 25 см 3. Довести до мітки.
4. З фільтратів взяти по 6 см 3 в великі пробірки, додати по 3 см 3 розчину сегнетової солі і 3 см 3 розчину сірчанокислої міді, добре перемішати і кип'ятити на водяній бані 10 хв. Виходить червоний осад.
5. Пробірки з розчином охолодити у воді, вміст відфільтрувати в великі пробірки. Прозорий фільтрат колоріметріровать на ФЕК, використовуючи світлофільтр з довжиною хвилі 630 нм, ширина кювети 1 см.
6. Для отримання калібрувальної кривої приготувати стандартний розчин: 6 мг глюкози в 1 см 3. Розведенням приготувати серію розчинів. Фотоколоріметріровать і побудувати криву: оптична щільність - концентрація глюкози в 1 см 3.
7. Обчислити активність і по табл. 15 оцінити ступінь насичення досліджуваних грунтів інвертазу.
Обробка даних
Активність інвертази (X) висловлюють в міліграмах глюкози на 1 г грунту за 24 год за формулою:
де А - кількість глюкози, отримане по калібрувальної кривої з оптичної щільності, мг / см 3;
m - навішування грунту, 5 г;
V - загальний об'єм фільтрату, 25 см 3;
v - об'єм фільтрату, взятого для аналізу, 6 см 3.
Помилка визначення - до 5%.
Визначення уреазной активності грунтів
Прилади, посуд, реактиви:
фотоколориметр; 2% -й розчин сечовини в фосфатному буфері (рН \u003d 6,7); 50% -й розчин сегнетової солі; 50% -й розчин CCl 3 COOH (трихлороцтової кислота); 1% -й розчин КС1; реактив Несслера; стандартний розчин NH 4 C1.
Порядок виконання роботи
1. За 5 г повітряно-сухого ґрунту помістити в колби ємністю 100 см 3, долити по 20 см 3 2% -го розчину сечовини в фосфатному буфері (рН 6,7) і по 200 мкл толуолу.
2. Колби щільно закрити і помістити в термостат при температурі 37 0 С на 4 ч.
3. Після експозиції долити по 1 см 3 50% -го розчину трихлороцтової кислоти.
4. Для витіснення з грунту поглиненого аміаку додати по 50 см3 1 зв. розчину хлористого калію.
5. Вміст колб відфільтрувати.
6. За 2 см 3 фільтрату помістити в мірні колби об'ємом 50 см 3, розвести водою до 30 см 3, потім долити по 2 см 3 50% -го розчину сегнетової солі і по 2 см 3 реактиву Несслера. Колби долити водою до мітки, перемішати і пофарбований розчин колоріметріровать при довжині хвилі 400 нм.
8. Обчислюють активність уреази.
9. За табл. 15 оцінити ступінь насичення досліджуваних грунтів уреазой.
Обробка даних
Активність уреази (X) висловлюють в міліграмах N-NH 4 на 1 г грунту за 4 год за формулою:
V - загальний об'єм фільтрату, 50 см 3;
m - навішування грунту, 5 м
Питання для самопідготовки:
1. Що таке каталазная активність?
2. Дайте оределеніе інвертазной активності.
3. Охарактеризуйте уреазний активність.
4. Що таке буферна суміш?
5. Принцип і сутність методу визначення активності ґрунтових ферментів.
6. Методика відбору зразків ґрунту.
ДОДАТКИ
Таблиця 1 - Зразковий список організмів - індикаторів сапробності
| організми | сапробність |
| Нитчасті бактерії: | |
| Sphaerotilus natans | р |
| Beggiatoa sp. | р |
| Thiothrix sp. | р |
| гриби: | |
| Leptomitus lacteus | α |
| Mucor racemosus | α |
| Fusarium aquaeductum | р |
| водорості: | |
| синьо-зелені: | |
| Anabaena flos aquae | β |
| Microcystis aeruginosa | β |
| Aphanizomenon flos aquae | β |
| Oscillatorla tenuis | α |
| діатомові | - |
| Cymbella cesati | про |
| Oomphonema cevli | про |
| Melostra granulata | β |
| Navicula angustata | α |
| Navicula apiculata | α |
| Synedra acus | β |
| Synedra ulna | β |
| Nitzschia palea | α |
| евгленовие: | |
| Euglena acus | β |
| Euglena viridis | р |
| Euglena deses | α |
| зелені і протококкових: | |
| Volvox globator | о-β |
| Ankistrodesmus falcatus | β-α |
| Crucigenta rectangularis | а-β |
| Scenedesmus quadricauda | β |
| Draparnaldia sp. | про |
| Ulothrix zonata | про |
| Stlgeoclonium tenue | α |
| тварини: | |
| амеби: | |
| Pelornyxa palustris | р |
| організми | сапробність |
| інфузорії: | |
| Colpidium, campylum | p |
| Colpldlum colpoda | p |
| Euplotes charon | β |
| Chllodon cucullulus | p |
| Opercularia coaretata | α |
| Paramecium caudatum | α |
| Spirostomum amblguum | α |
| Stentor coeruleus | α |
| Vortlcella convallarla | α |
| Vorticella microstoma | p |
| Podophrya fixa | α |
| коловертки: | |
| Kellcottia longispina (syn. Notholca Iongispina) | про |
| Keratella cochlearls | β |
| Keratella quadrata | β |
| Leucane lunarls (syn. Monostyla lunarls) | β |
| Rotaria rotatoria (syn. Rotifer vulgaris) | α |
| олігохети: | |
| Limnodrilus hofmelsterl | p |
| Tub if ex tublfex | p |
| Stylarla lacustris | β |
| ракоподібні: | |
| Daplmla magna | α |
| Daphnla pulex | α |
| Leptodora Kindtli | про |
| Eudiaptomus gracilis | o |
| Astacus fluviatilis | o |
| комахи: | |
| Caenls macrura | o |
| Heptagenia coerulana | β |
| Chironomus Plumosus | р |
| риби: | |
| лящ: | β |
| вусань | β |
| форель | o |
| лин | β-α |
Таблиця 2 - Шкала частот для перерахунку організмів в 100 полях на частоту
| значення частоти | мікробентосу | обростання | |
| дані підрахунку | Сума в 100 полях | ||
| 1-я категорія крупності | |||
| Не більше 1 в кожному 2-м поле зору не більше 2 в полі зору не більше 10 в полі зору не більше 30 в полі зору не більше 60 в полі зору Понад 60 в поле зору | Не більше 1 в кожному 2-м поле зору не більше 2 в полі зору не більше 10 в полі зору не більше 50 в полі зору не більше 250 в поле зору Більше 250 в поле зору | 1-50 50-200 200-1000 1000-5000 5000-25000 Більш 25000 | |
| 2-я категорія крупності | |||
| Не більше 1 в кожному 20-му полі зору не більше 1 в кожному 5-му полі зору не більше 1 в поле зору не більше 3 в поле зору не більше 6 в полі зору Більше 6 в полі зору | Не більше 2 в 20 полях зору не більше 1 в 5 поле зору не більше 1 в поле зору не більше 5 в поле зору не більше 25 в полі зору Понад 25 в поле зору | 1-5 6-20 21-100 100-500 500-2500 Більше 2500 | |
| 3-ю категорію крупності | |||
| 1 в 100 полях зору 1 в 50 полях зору Не більше 1 в 10 полях зору Не більше 1 в 4 полях зору Не більше 1 в 2 полях зору Приблизно 1 в поле зору | 1 в 100 полях зору 1 в 50 полях зору Не більше 1 в 10 в полях зору 1В2 полях зору Не більше 2 в полі зору Більше 2 в полі зору | 3-10 10-50 50-200 Більше 200 |
прикладна програма
Таблиця 13. Перерахунок результатів кількісного обліку на значення частоти
прикладна програма
Приклад обчислення сапробности
Проба: річка нижче міста. Дата ________________ Спільнота: обростання.
| організми | s | h | sft |
| Euglena viridis | p | ||
| Scenedesmus acuminatus | β | ||
| Spirogyra sygmoidea | β | ||
| Closterium acerosum | α | ||
| Closterium moniliierum | β | ||
| Cyclotella menengiana | α | ||
| Cymbella vesiculosa | β | ||
| Diatoma vulgare | β | ||
| Melosira italica | β | ||
| Melosira varians | β | ||
| Navicula cryptocephala | α | ||
| Navicula viridua | α | ||
| Nitzschia acicularis | β | ||
| Nitzschia palea | α | ||
| Surirella ovata | β | ||
| Chilidonella cuculata | α | ||
| Colpoda cuculus | α | ||
| Sh \u003d 41 | S (sh) \u003d 103 |
Sh p \u003d 3; Sh α \u003d 15; Sh β \u003d 23.
S \u003d S (sh) / (Sh) -103 / 41 \u003d 2,51 /
Обчислення похибки:
Інтервал точності для статистичної надійності 95%.
S \u003d s ± t 0,05 s S \u003d 2,51 ± 2,02 × 0,1;
Схожа інформація.
